BAAR


BAAR
Código; BAARP(829)

MATERIAL
DIVERSOS

MEIO(S) DE COLETA
Frasco estéril

PRAZO
1 dia útil

REALIZAÇÃO
Segunda a sábado

MÉTODO
COLORAÇÃO DE ZIEHL - NEELSEN

INSTRUÇÕES DE PREPARO
Dados BAARP:
Identificar a região de coleta da amostra. Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 2ª amostra - PBAR2; 3ª amostra - PBAR3, 4ª amostra - PBAR4 e 5ª amostra PBAR5). Quando houver a necessidade de devolução da lâmina, o formulário de devolução deve ser preenchido e encaminhado junto com a amostra (disponível em formulários obrigatórios - site DB).
Outros: Não serão aceitas amostras em lâminas.

INSTRUÇÕES DE COLETA

Coleta Escarro BAARP:
Coletar preferencialmente, a primeira amostra da manhã. Orientar o paciente a enxaguar previamente a boca com água, várias vezes, para remover a flora bacteriana superficial dessa região e colher a amostra obtida após tosse profunda, diretamente em frasco de boca larga com tampa de rosca.

INTERPRETAÇÃO

A coloração para bacilos álcool-ácido resistentes (BAAR) é utilizada basicamente para micobactérias. Esta coloração é um método rápido para a detecção de micobactérias em amostras clínicas e utlizada tanto para diagnóstico inicial como para acompanhamento da eficácia de tratamento de pacientes com tuberculose. A tuberculose é uma doença infecto-contagiosa causada pela bactéria Mycobacterium tuberculosis ou Bacilo de Koch (BK), que afeta principalmente os pulmões, mas, também podem ocorrer em outros órgãos do corpo, como ossos, rins e meninges (membranas que envolvem o cérebro).